2015/12/11 0:00:00 1,2, 马小军^2*, 莫长明³, 赵 欢², 涂冬萍², 白隆华³, 冯世鑫³]]> 8true -1罗汉果苦味皂苷的酶、60～65 ℃反应24 h。经实际罗汉果苦果样品验证了方法的可行性,所获得的产品可以完全消除苦味,并且带有淡淡的甜味,经HPLC-MS确定了所获得的微甜产物为3～6个糖的皂苷混合物。该方法对于目前罗汉果生产中大量出现并被遗弃的嫩果、苦果以及脱苦工艺中产生的罗汉果皂苷II而言,是一种潜在的实现废物利用的方法。]]> 2015/12/11 0:00:00 1,2, 刘金磊¹, 卢凤来¹, 宋云飞², 李元元², 李典鹏^1*]]> 7true TM 2000)首次测定了罗汉果基因组大小,并利用生物信息学方法估计罗汉果杂合率、重复序列和GC含量等基因组信息。结果表明:(1)获得了18.1 Gb罗汉果基因组测序数据,基因组大小估计为344.95 Mb左右,测序深度为52×;(2)从K-mer分布曲线发现罗汉果基因组有明显的杂合峰,杂合率达1.5%,基因组高杂合导致组装的结果中Contig N50和Scaffold N50的长度比预期的要短很多,还造成GC平均深度及含量分布明显异常,存在一个低深度分布区域。基因组主峰后面有微弱的重复峰,说明罗汉果存在较多的重复序列;(3)由于罗汉果存在高杂合率和重复序列较多的特点,该基因组测序分析仅采用全基因组鸟枪法(WGS)策略不合适,为了更好地对全基因组进行序列拼接和组装,可尝试结合采用Fosmid-to-Fosmid或BAC-to-BAC策略。该研究结果对于揭示罗汉果产量、有效成分含量、发育及抗病虫的分子机制,以及通过分子育种来提高甜苷V含量和降低生产成本具有重要意义,为全基因组测序策略的选择提供了依据。]]> 2015/12/11 0:00:00 2,3, 马小军^1*, 莫长明³, 潘丽梅³, 韦荣昌³, 赵 欢¹]]> 6true 2015/12/11 0:00:00 1, 黄振聪², 颜小捷¹, 陈月圆¹, 徐 风³,蔡少青³, 李典鹏^1*]]> 5true HMGR)作为萜类化合物生物合成途径中的第一个限速酶,位于甲羟戊酸(MVA)途径中,是罗汉果甜苷V生物合成途径中的重要调控位点。为了深入了解罗汉果甜苷V的生物合成途径,该研究从罗汉果转录组数据中获得一条编码HMGR的unigene,以授粉后3 d的幼果作为实验材料,通过RACE技术获得了1 926 bp的全长序列,经过生物信息学软件分析,发现该基因含有1 749 bp的开放阅读框,编码582 氨基酸残基,含2段跨膜区,分别位于50～72 aa和93～115 aa,亚细胞定位预测位于质膜或内质网上,预测该蛋白没有信号肽,系统进化树分析显示与同科植物黄瓜和甜瓜中HMGR基因的同源性最高。该研究采取去掉N端跨膜区的方法,构建原核表达载体转化大肠杆菌BL21(DE3),经IPTG诱导在上清和沉淀中均有融合蛋白出现,尤其在25 ℃诱导过夜后上清中表达最明显。该文是首次对SgHMGR基因全长序列的克隆及原核表达的功能验证,为进一步深化SgHMGR基因在罗汉果甜苷V生物合成途径中的功能及分子调控研究打下基础。]]> 2015/12/11 0:00:00 1, 莫长明², 唐 其³, 白隆华², 马小军^1*]]> 4true 2015/12/11 0:00:00 1, 闫海锋^1,2,3, 李 虹¹, 蒋水元^1*, 李 锋^1,4]]> 3true 2015/12/11 0:00:00 1, 莫长明¹, 唐 其¹, 潘丽梅¹, 白隆华¹, 马小军^2*]]> 2true -1,罗汉果皂苷V的反应浓度为0.2 g·L^-1,水解时间为10 h。经多次验证,该水解条件重现性好,可用于从50%罗汉果皂苷V中水解制备罗汉果皂苷IIIE、III、IVE和赛门苷I等罗汉果皂苷。该研究结果为进一步水解其他罗汉果次级皂苷提供了依据。]]> 2015/12/11 0:00:00 1,2, 卢凤来², 王 磊², 陈 兵^1,2, 徐 风³, 蔡少青³, 李典鹏^2*]]> 1true